一文與您分享基因探針法PCR試劑盒的正確使用方法
點擊次數：38 更新時間：2026-02-02
基因探針法PCR試劑盒是分子診斷、病原檢測、基因表達分析及轉基因鑒定的核心工具，通過序列特異性引物與5'端標記熒光、3'端標記淬滅基團的水解探針，實現高特異性、高靈敏度。若操作不當，易導致假陽性、假陰性、擴增效率低或Ct值漂移。
基因探針法PCR試劑盒應遵循防污染、精配液、嚴操作、準分析的原則，是確保結果真實可靠的關鍵。
一、實驗前準備
嚴格分區操作：
設立獨立區域：試劑配制區→樣本處理區→擴增區，單向流動，禁止交叉；
使用帶濾芯吸頭、專用移液器及實驗服，所有耗材無DNA/RNA酶；
試劑解凍與混勻：
將MasterMix、引物/探針、內參等試劑從–20℃取出，室溫避光解凍；
輕柔渦旋混勻，瞬時離心去除管壁液體，避免反復凍融（建議分裝使用）。
二、反應體系配制
推薦20μL體系示例：
2×TaqManMasterMix：10μL
正向/反向引物（10μM）：各0.4–0.8μL
探針（10μM）：0.4μL
模板DNA/cDNA：1–5μL（濃度適中，避免抑制劑殘留）
無核酸酶水補足至20μL
操作要點：
先配制主混合液（MasterMix+引物+探針+水），再分裝，減少加樣誤差；
模板加入，加樣后立即蓋緊管蓋，防止氣溶膠污染。
三、上機運行與程序設置
標準qPCR程序：
預變性：95℃30秒（激活熱啟動Taq酶）；
循環40–45次：95℃5秒→60℃30–60秒（采集熒光信號）；
熔解曲線（如需）：不適用于TaqMan探針法（因探針水解不可逆），僅用于SYBRGreen法。
四、結果判讀與質控
有效判定標準：
陰性對照（NTC）無擴增曲線（Ct>40或未檢出）；
陽性對照Ct值在預期范圍內（如20–25）；
內參基因Ct穩定（樣本間差異≤1個Ct）；
定量分析：
采用ΔΔCt法或標準曲線法，確保擴增效率90–110%（斜率–3.1～–3.6）。
